Separacja komórek technologią EasySep™

01 Sierpnia 2023 (Ostatnia aktualizacja 17.10.2024)

Współczesne badania naukowe wymagają szybkich i efektywnych rozwiązań. Aby sprostać tym oczekiwaniom naukowcy ze STEMCELL opracowali najwydajniejszy sposób izolowania komórek w technologii EasySep™. Łączy ona specyficzność przeciwciał monoklonalnych z prostotą bezkolumnowego systemu magnetycznego, w celu szybkiej i łatwej izolacji wysoce oczyszczonych komórek, które są gotowe do dalszych zastosowań. Ta wszechstronna immunomagnetyczna technologia separacji komórek umożliwia selekcję pozytywną, selekcję negatywną.

EasySep™ to powszechnie stosowana metoda izolacji.

Od momentu wprowadzenia na rynek w 2002 r., systemy EasySep™ są używane przez naukowców z całego świata, a lista publikacji przekracza 7000.

Szybkość izolacji systemami EasySep™

Wykorzystanie silnych magnesów zamkniętych rodziny EasySep™, oraz nanocząsteczek magnetycznych  RapidSpheres™ gwarantuje ultra-szybkie, nawet kilkuminutowe protokoły izolacji. Systemy EasySep™ są w stanie izolować niektóre populacje komórek w zaledwie 8 minut. Typowe populacje ludzkich komórek odpornościowych można wyizolować w zaledwie 8 minut, a populacje typowych mysich komórek odpornościowych w ledwie 15 minut. Średni czas protokołu izolacji komórek dla wszystkich zestawów EasySep™ nowej generacji, w tym dla bardziej złożonych typów komórek, które wymagają sekwencyjnej separacji (np. limfocyty T regulatorowe), wynosi tylko 20 minut. EasySep™ to gwarancja najprostszych i najszybszych protokołów izolacyjnych.

Systemy izolacji EasySep™ akceptują różne źródła pochodzenia próbek

W zależności od typu zestawu i rodzaju komórek, izolację można przeprowadzić z różnych próbek:

  • pełna krew
  • kożuszek leukocytarno-płytkowy - składnik krwi powstały z odwirowania krwi pełnej, zawierający znaczną część leukocytów i płytek krwi.
  • szpik kostny
  • krew pępowinowa
  • Leukopak (wzbogacony produkt aferezy pobrany za pomocą leukaferezy, czynności polegającej na ekstrakcji białych krwinek (WBC) z krwi obwodowej)
  • PBMC - jednojądrzaste komórki krwi obwodowej - izolowane ze świeżo pobranej heparynizowanej krwi przez wirowanie w gradiencie gęstości przy użyciu preparatu Lymphoprep. Są to limfocyty T; cytotoksyczne (Tc), pomocnicze (Th), regulatorowe (Treg), komórki NK, limfocyty B
  • Izolat komory leukoredukcyjna - oparte na filtrach separatory komórkowe umożliwiające otrzymanie ubogoleukocytarnych składników krwi
  • splenocyty
  • węzły chłonne

z różnych gatunków (np. człowieka, myszy, naczelnych innych niż człowiek, szczur, królik, krowa i świnia).

EasySep™ selekcja pozytywna vs. selekcja negatywna.

To, czy zastosować metodę selekcji pozytywnej, czy selekcji negatywnej, jest jednym z najczęściej zadawanych pytań dotyczących separacji immunomagnetycznej komórek.

Metoda immunomagnetycznego rozdzielania komórek w następstwie selekcji pozytywnej wymaga bezpośredniego znakowania pożądanych komórek do selekcji przeciwciałem lub ligandem, które rozpoznają określone białko powierzchniowe komórki. Przeciwciało lub ligand są połączone z nanocząsteczkami magnetycznymi, co umożliwia zatrzymanie znakowanych komórek w końcowej wyizolowanej frakcji po inkubacji próbki w polu magnetycznym.

Podstawowe cechy metody pozytywnej selekcji magnetycznej:

  • wyizolowane komórki są wysoce oczyszczone
  • izolowane komórki są zwykle związane przeciwciałami i cząstkami magnetycznymi
  • koktajl przeciwciał rozpoznaje zestaw unikatowych markerów powierzchniowych na komórkach docelowych
  • można wyizolować dodatkowe populacje komórek z frakcji ujemnej

Separacja komórek w wyniku selekcji negatywnej, również wykorzystuje przeciwciała lub ligandy skierowane przeciwko określonym białkom powierzchniowym komórek ale tym razem w celu ich usunięcia. Przeciwciała lub ligandy są połączone z nanocząstkami magnetycznymi, co pozwala na usunięcie znakowanych, niepożądanych komórek z końcowej wyizolowanej frakcji poprzez inkubację próbki w polu magnetycznym. Ponieważ pożądane komórki nie są specyficznie ukierunkowane przez przeciwciała lub ligandy, pozostają niezwiązane cząstkami.

Typowe cechy negatywnych metod selekcji magnetycznej:

  • izolowane komórki nie są związane cząstkami magnetycznymi
  • protokoły są szybsze i łatwiejsze przy minimalnej manipulacji próbkami
  • koktajl przeciwciał celuje we wszystkie niepożądane komórki z wyjątkiem pożądanych komórek

EasySep™ kombinacja selekcji pozytywnej i negatywna w przypadku izolacji szczególnych populacji komórek

Niektóre typy komórek mogą wymagać kombinacji negatywnej i pozytywnej selekcji w celu pomyślnego ich oczyszczenia. Na przykład izolacja limfocytów regulatorowych (Treg) CD4+ CD127low CD25+ jest wyzwaniem ze względu na konieczność selekcji na podstawie trzech różnych markerów powierzchniowych. Umożliwia to technologia EasySep™ łącząc strategie negatywnej i pozytywnej selekcji.

Obrazuje to poniższy schemat.

Kompatybilność EasySep™ z FACS.

FACS Pre-enrichment (Selekcja negatywna do szybkiego wstępnego wzbogacenia komórek docelowych przed FACS).

Izolowanie rzadkich typów komórek za pomocą FACS (fluorescence-activated cell sorting / sortowanie komórek aktywowane fluorescencją) może wiązać się z długimi czasami sortowania. Naukowcy mogą znacznie skrócić wymagany czas sortowania komórek, stosując immunomagnetyczną separację komórek w celu wstępnego wzbogacenia komórek docelowych. W takim przypadku pożądane są szybkie protokoły i wysoki odzysk, aby zaoszczędzić czas i zmaksymalizować wydajność komórek docelowych wynikającą z procedury sortowania przepływowego. Selekcja negatywna jest zazwyczaj idealnym podejściem, ponieważ jest szybka, zapewnia bardzo wysoki poziom odzysku i nie znakuje komórek będących przedmiotem zainteresowania. Pozwala to naukowcom na wykorzystanie dowolnych przeciwciał znakowanych fluoroforem przeciwko specyficznym markerom powierzchniowym komórek, które będą izolowane w sorterze FACS.

Wstępne wzbogacenie można przeprowadzić przed FACS dla szerokiej gamy określonych populacji komórek, w tym komórek specyficznych dla antygenu, populacji limfocytów Th, limfocytów B i wrodzonych komórek limfoidalnych (ILC) etc.

Rozpoczynając od świeżej próbki leukaferezy, wyizolowano ludzkie nieswoiste komórki limfoidalne (ILC) metodą sortowania komórek aktywowanych fluorescencją (FACS) równolegle z próbki niewzbogaconej lub wzbogaconej
w EasySep™. (A)  
W niewzbogaconej próbce częstotliwość ILC oceniano za pomocą cytometrii przepływowej na początku i po jednej rundzie FACS. (B)  
W próbce wzbogaconej w EasySep™ częstotliwość ILC oceniano natychmiast po wzbogaceniu w EasySep™ i ponownie po jednej rundzie FACS. (C) Odpowiednie czystości i czasy FACS na każdym etapie.

EasySep™  - wysoka czystość i odzysk izolowanych komórek

Protokoły separacji komórek EasySep™ są nieustannie optymalizowane, dzięki czemu można osiągnąć najwyższą czystość i odzysk izolowanych komórek.

Wykres 1. EasySep™ zapewnia co najmniej równoważną lub lepszą czystość i odzysk ludzkich limfocytów T w porównaniu z technologią kolumnową.  

Komórki T izolowano przez selekcję negatywną (Neg Sel) lub selekcję pozytywną (Pos Sel) przy użyciu systemów EasySep™ lub dostępnej w handlu technologii opartej na kolumnach. Izolacja EasySep™ dała porównywalną lub lepszą czystość (A) i odzysk (B) z dostępnym na rynku systemem. Dane przedstawiono jako średnią ± SEM; n = 3.
  
Wykres 2. EasySep™ zapewnia co najmniej równoważną lub lepszą czystość i odzysk mysich komórek CD11b+ w porównaniu z technologią kolumnową.

Komórki CD11b+ wyizolowano ze śledziony myszy przez pozytywną selekcję przy użyciu EasySep™ lub dostępnego w handlu zestawu opartego na kolumnach. Postępowano zgodnie z protokołem alternatywnej wersji handlowej, stosując ich standardowy protokół lub ich opcjonalny protokół „wysokiej czystości”, który zalecał dodatkową kolumnę. Izolacja EasySep™ dała porównywalną lub lepszą (A) czystość i (B) odzysk. Dane przedstawiono jako średnią ± SEM; n = 4 - 6.

Magnesy EasySep™

STEMCELL oferuje wiele rodzajów wysokowydajnych magnesów do separacji immunomagnetycznej, Obsługują one zarówno probówki polistyrenowe (5, 14, 50 ml), płytki 96-dołkowe, oraz butelki hodowlane T-25. Daje to niezrównaną wolność w doborze naczynia hodowlanego w którym dokonywana będzie izolacja.

Nr katalogowyNazwaObsługiwane naczynie /
maksymalna ilość komórek
18000EasySep™ Magnet5 ml (12 x 75 mm) probówki PS2,5 x 108 komórek
18001“The Big Easy” EasySep™ Magnet14 ml (17 x 95 mm) probówki PS1 x 109 komórek
18002Easy 50 EasySep™ Magnet50 ml (30 x 115 mm) probówki PS4 x 109 komórek
100-0821Easy 250 EasySep™ Magnet225 ml, standardowa butelka hodowlana T-25
1.25 x 1010 komórek
18103EasyEights™ EasySep™ Magnet5 ml (12 x 75 mm) probówki PS +
14 ml (17 x 95 mm) probówki PS0,1 x 108 do 8,5 x 108 komórek
18102EasyPlate™ EasySep™ MagnetStandardowa płytka 96-dołkowa2 x 107 komórek / dołek

To może Cię zainteresować...

EPOCH 2 - starszy brat o większych możliwościach
EPOCH 2 - starszy brat o większych możliwościach

EPOCH 2 - starszy brat o większych możliwościach

Spektrofotometry mikropłytkowe, czyli czytniki płytek do pomiaru absorbancji oparte o monochromator, na stałe zadomowiły się w polskich laboratoriach. Mimo, że czytniki filtrowe, takie jak 800 TS, wciąż znajdują swoich odbiorców, to dla większości Użytkowników spektrofotometr będzie bardziej uniwersalnym wyborem.

LogPhase – czytnik dla mikrobiologa
LogPhase – czytnik dla mikrobiologa

LogPhase – czytnik dla mikrobiologa

Wykorzystanie mikroorganizmów leży u podstaw przemysłu biotechnologicznego. Niezależnie od tego czy mowa jest o produkcji żywności, leków, alternatywnych tworzyw syntetycznych czy biopaliw, to niezbędne jest badanie tempa i charakterystyki wzrostu drobnoustrojów.

CRISPR/Cas9 – historia, zastosowania i nowe metody syntezy ssDNA
CRISPR/Cas9 – historia, zastosowania i nowe metody syntezy ssDNA

CRISPR/Cas9 – historia, zastosowania i nowe metody syntezy ssDNA

Emmanuelle Charpentier i Jennifer A. Doudna zostały w 2020 roku uhonorowane Nagrodą Nobla w dziedzinie chemii za rozwój metody CRISPR/Cas9, nazywanej potocznie precyzyjnymi nożyczkami genetycznymi. Należy jednak pamiętać, że zainteresowanie wielu badaczy oraz jednostek naukowych na całym Świecie tym niezwykle precyzyjny narzędziem do edycji genów sięga późnych lat 80 tych XX wieku.

Zobacz wszystkie