Barwienie wielokrotne

10 Grudnia 2019 (Ostatnia aktualizacja 02.10.2024)

Wybór przeciwciał do jednoczesnego wykrywania więcej niż jednego antygenu zależy przynajmniej od dwóch ważnych kryteriów:

* dostępności przeciwciał wtórnych, które nie rozpoznają a) siebie nawzajem (powinny pochodzić z tego samego gospodarza), b) innych przeciwciał pierwotnych użytych w badaniu, c) immunoglobulin pochodzących z innego gatunku występujących w układzie badanym lub d) endogennych immunoglobulin obecnych w tkankach lub komórkach badanych

* użycie odpowiedniej sondy (produkty reakcji enzymatycznej, fluorofory lub cząsteczki o dużej gęstości elektronowej)

Przeciwciała oczyszczone metodą chromatografii powinowactwa oznaczone symbolem „ML” (znakowanie wielokrotne) zostały specjalnie przygotowane, tak by spełniać powyższe kryteria. Jeden z wielu możliwych protokołów znakowania przy użyciu takich odczynników został przedstawiony poniżej.

  • Antygen A tkanki mysiej
    Krok 1: blokowanie przy użyciu 5% normalnej surowicy oślej 
    Krok 2: p. kozie anty-antygen A 
    Krok 3: sonda 1 skoniugowana z oślim anty-kozim IgG (H+L) (min X Ck, GP, Sy Hms, Hrs, Hu, Ms, Rb, Rat Sr Prot)

  • Antygen B tkanki mysiej
    Krok 4: blokowanie przy użyciu 5% normalnej surowicy oślej (jeśli jest potrzebne)
    Krok 5: p. królicze anty-antygen B 
    Krok 6: sonda 2 skoniugowana z oślim anty- króliczym IgG (H+L) (min X Bov, Ck, Gt, GP, Sy Hms, Hrs, Hu, Ms, Rat, Shp Sr Prot)

  • Antygen C tkanki mysiej
    Krok 7: blokowanie przy użyciu 5% normalnej surowicy oślej (jeśli jest potrzebne)
    Krok 8: p. szczurze anty-antygen C 
    Krok 9: sonda 3 skoniugowana z oślim anty- szczurzym IgG (H+L) (min X Bov, Ck, Gt, GP, Sy Hms, Hrs, Hu, Ms, Rb, Shp Sr Prot)

Uwaga: po każdym kroku dokładnie przepłukać, włącznie z krokiem 1. Przy mocnym i trwałym tle dalsze blokowanie może być wymagane w kroku 4 i 7. Nie rozcieńczać przeciwciał surowicą normalną, ani nie mieszać przeciwciał ze sobą.

W przykładzie tym, przeciwciała użyte w kroku 3, 6 i 9 nie rozpoznają się wzajemnie ponieważ pochodzą z tego samego gospodarza. Zostały również poddane adsorpcji, dlatego nie rozpoznają innych przeciwciał pierwotnych użytych w kroku 2, 5 i 8. Nie reagują także z endogennymi Ig, które mogą być obecne w tkance mysiej.

Przykładowe barwienia:

Przekrój pionowy skóry ludzkiej pobranej z uda

Komórki Langerhansa (Cy2, zielony), błony podstawowe (Cy3, czerwony), komórki tuczne (Cy5, niebieski).

Zdjęcie wykonane przez Dr. William R. Kennedy i Dr. Gwen Wendelschafer-Crabb, Department of Neurology, University of Minnesota.


Błona śluzowa żołądka

Kolagen typu IV (Alexa Fluor 488, zielony), PGP 9.5 (DyLight 649, czerwony)
Zdjęcie wykonane przez Dr. Gwen Wendelschafer-Crabb, Kennedy Lab,
University of Minnesota.

To może Cię zainteresować...

Czy warto robić przeglądy czytników mikropłytkowych?
Czy warto robić przeglądy czytników mikropłytkowych?

Czy warto robić przeglądy czytników mikropłytkowych?

Większość producentów urządzeń mikropłytkowych, w tym również BioTek Instruments Inc., zaleca wykonywanie regularnych przeglądów swoich urządzeń przez autoryzowany serwis. W czasie takiego przeglądu nasi serwisanci sprawdzają poprawność działania urządzenia oraz dokonują w razie konieczności czyszc...

Honeybun | Najszybszy na rynku wiskozymetr i reometr w jednym
Honeybun | Najszybszy na rynku wiskozymetr i reometr w jednym

Honeybun | Najszybszy na rynku wiskozymetr i reometr w jednym

Honeybun to jedyny szybki wiskozymetr i reometr, który dostarcza dane tak szybko, jak jesteś w stanie je przetworzyć. Niezależnie od tego, czy masz jedną próbkę, czy dziesięć, Honeybun pobiera mikrolitry każdej próbki przez mikroprzepływowy kanał, aby w kilka minut określić lepkość w zakresie 0,5–150 cP – bez przygotowania próbek i bez czyszczenia. Zapomnij o starych, żmudnych metodach „po jednej próbce”, które zużywają mnóstwo materiału. Wejdź na wyższy poziom dzięki najszybszym i najmniej wymagającym pomiarom lepkości. Parametry: 10 próbek jednocześnie 35 μl na próbkę (15 μl w trybie małej objętości) 1 minuta dla ≤10 cP Zakres do 150 cP

Leprechaun | Bezkonkurencyjne narzędzie do charakterystyki lentiwirusów i pęcherzyków zewnątrzkomórkowych/egzosomów
Leprechaun | Bezkonkurencyjne narzędzie do charakterystyki lentiwirusów i pęcherzyków zewnątrzkomórkowych/egzosomów

Leprechaun | Bezkonkurencyjne narzędzie do charakterystyki lentiwirusów i pęcherzyków zewnątrzkomórkowych/egzosomów

Znajdź swój garniec złota Leprechaun to jedyny system, który określa miano i strukturę wirusów oraz egzosomów, bez względu na czystość próbki. Trzykrotnie sprawdza cząsteczki lentiwirusa, aby upewnić się, że mają odpowiedni rozmiar, właściwą strukturę i zawierają RNA – zarówno w próbkach surowych, jak i oczyszczonych. Ujawnia stężenie i fenotyp egzosomów w próbkach od hodowli komórkowych po płyny biologiczne. Podążaj za Leprechaunem prosto do miana wirusów lub stężenia egzosomów, których szukasz – bez zakłóceń powodowanych przez „zwodnicze” cząstki. Lentiwirusy • Miano • Struktura • Zawartość RNA • Analiza zanieczyszczeń Pęcherzyki zewnątrzkomórkowe/Egzosomy • Rozmiar • Stężenie • Fenotyp

Zobacz wszystkie